1、首先收集ELISA实验的所有数据，对每个孔的吸光度值进行背景校正。然后根据标准曲线，将修正后的吸光度值转化为样品的浓度。最后将数据转化为柱状图、折线图等形式即可。
2、该方法需要提供原始数据。ELISA原始数据包括实验组和对照组的样本数据，以及样本的比值或浓度等数据。这些数据是实验分析的基础，需要通过实验获得，并经过正确的统计学处理和分析，才能得出可靠的结论。原始数据需要妥善保存，以便后续的复查或其他研究使用。
3、elisa原始数据是需要提供的。elisa一般分为实验组和对照组，以及按比值分组，所以有三个变量（可能每个人的实验不一样，我是做CART和肿瘤细胞共培养后收集细胞因子上清液检测）：细胞因子浓度（定量数据）、比值（等级数据，也就是半定量数据，我的为5：1，10：1两个比值）、组别（定性数据）。
4、ELISA就是我们常说的酶联法。现在国内最差也是用3代试剂，有些地方会用4代试剂。4代试剂（检查抗原+抗体）——窗口期为4周。因为抗原于3-4周达到复制的峰值，此时通过4代试剂检查，如果感染了HIV，抗原/抗体至少有一个为阳性，如果都是阴就排除了。3代试剂（只查抗体）——窗口期为6周。
1、首先你要明确你要测的样品的表达情况，如果低的话那你就得可以先用一两个孔，把你的样品原液稀释为一倍，五倍，做个预实验不用去测荧光表达，在加完终止液后直接观察颜色加好，然后确定你样品检测时的浓度。。
2、因此测定IgM抗本多用捕获法，先将所有血清IgM（包括特异性IgM和非特异性IgM）固定在固相上，在去除IgG后再测定特异性IgM。操作步骤如下： （1）将抗人IgM抗体连接在固相载体上，形成固相抗人IgM。洗涤。 （2）加入稀释的血清标本：保温反应后血清中的IgM抗体被固相抗体捕获。
3、可以先做一个较大范围几个样品稀释度来检测，比如，10倍，100倍，1000倍等。看那个稀释度落到线性范围。然后根据这个结果调整稀释倍数。
4、稀释后各孔加样量都为50μl，浓度分别为120ng/L，80ng/L ，40ng/L，20ng/L，10ng/L）。加样：分别设空白孔（空白对照孔不加样品及酶标试剂，其余各步操作相同）、待测样品孔。在酶标包被板上待测样品孔中先加样品稀释液40μl，然后再加待测样品10μl（样品最终稀释度为5倍）。
5、不知道你使用的样品是什么？如果是血清或者血浆，你需要考虑基质效应，如果使用没有干扰物质的血清来稀释，差别应该不大。
1、如果是新的数据，你只要双击图表，把它输入到图表的数据中，就可以拟和曲线。根据曲线方程式，计算出浓度。
2、选择这些输入的数据，用插入里的图表按钮，进入图表向导，在“标准类型”中选择“xy散点图”；在“子图表类型”中选择“折线散点图”，按“下一步”；选择“系列产生在行”，按“下一步”；数据标志，可以填写：如数据y轴，OD值；数据x轴，浓度；按下一步，点击完成。可得曲线图。
3、其他数值比空白值还低，说明你的这个检测不成功，其他的结果即使很低，也应该和空白值差距不大，如果差距比较大，建议你重测。如果差距不大，建议你用较低的值来取代空白值。
4、先对相同浓度的取平均，然后按浓度由小到大做图，纵轴是A490显示的吸光度。
5、首先收集ELISA实验的所有数据，对每个孔的吸光度值进行背景校正。然后根据标准曲线，将修正后的吸光度值转化为样品的浓度。最后将数据转化为柱状图、折线图等形式即可。
可以分析 不同时期抗体水平的变化（OD值），即对照组与实验组有无区别（统计学上的区别）。分析个体动物抗体水平达到明显高于对照组的时间差异，用方差分析先看总体上有无差异，然后两比较，看出现差异的每对之间是否由于一些相同的因素而导致了差异的出现，如年龄、性别、体重。
计算平均值和标准差：将所得到的三次实验数据相加后取平均数，并计算标准差。可以帮助了解实验数据的变异程度。统计显著性水平：使用t检验或方差分析等方法来确定实验结果之间存在显著差异。可以帮助确定实验结果之间的差异。
从样品的浓度计算公式也可以看出来：样品浓度＝（样品OD-空白）/（标准OD-空白）×标准品浓度，如果不减空白就相当于按此公式：样品浓度＝样品OD/标准OD×标准品浓度 进行计算了，这是明显不正确的。
你可以使用SPSS的explore，或PP图，或QQ图，或One-Sample Kolmogorov-Smirnov Test来考察你的数据的正态分布情况。
